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RNA干扰Ezrin蛋白表达对胰腺癌细胞系
Pane一1细胞生物学行为的影响
目的探讨RNA干扰Ezrin对胰腺癌胞系Pane+1细胞生物学行为的影响。方法建
立靶向Ezrin干扰质粒稳定转染Pane一1细胞,并用流式细胞术检测细胞周期CCK.8法检测细胞增
殖情况,扫描电镜观察细胞表丽形态及表面突起的变化软琼脂克隆形成实验检测细胞体外非锚着依
赖性的生长能力,用未包被及包被Matrigel胶的Transwell小室分别检测细胞的运动和侵袭能力
结果RNA干扰Ezfin后其蛋白的表达明显下降,Pane.1表面的细胞突起、微絨毛数量明显减少体
外非锚着依赖性的生长能力也明显下降,运动及侵袭能力也明显下降但对细胞的体外增殖和细胞周
期没有明显的影响。结论Ezrin蛋白的表达对胰腺癌细胞的细胞突起、表面微绒毛的形成、细胞骨
架及非锚着依赖性的生长发挥着重要的作用干擾Ezfin的表达将对胰腺癌细胞的表面突起的形成、
细胞骨架以至细胞运动及在转移灶的存活中起着重要的作用。
【关键词】胰腺肿瘤;细胞骨架;肿瘤细胞培养的
MENG地n—xiao.YU
Shuang—ni.£U
Zhao—hui,CHEN
Jie.Department
PathologyPeking
Hospital,Chinese
SciencesPeking
College,Be柳ng
100730China
Corresponding
author:CHEN
Jic,E—maif:xhblk@163.corn
【Abstract】0bjective
Pane一1.Methods
transfected
plasmid.The
proliferation
respectively.Cellular
protrusions/microvilli
microscopy.Colony
anchor.independent
vitro.Trans.filter
witll/without
protrusions/microvilli
formationanchorage—independent
growth,cell
invasionbut
proliferation
Pane.1.Conclusion
protrusions/microvilli
formation,anchorage—independent
growthcell
words】Pancreatic
Cytoskeleton;Tumor
cell,cultured
Ezrin为一种胞质内的细胞骨架蛋皛属于
ERM(Ezrin.radixin—moesin)家族,由Vil2基因编码
在细胞骨架和细胞膜之间起连接作用¨J,参与细胞
形态改变、细胞膜结构组建、细胞运动、黏附及相关
信号转导,在肿瘤细胞运动、黏附、侵袭中发挥重要
作用心j胰腺癌细胞极强的侵袭和转移能力与患
DOI:10.3760/cma.j.issn.0529-5807.2012.12,009
基金项目:国家自然科学基金(30471970);国家科技支撑计划
(2006BAl02A14);卫生行业科研专项课题(200802011)
作者单位:100730中国医学科学院北京协和医学院北京协和
通信作者:陈杰E—mail:xhblk@163.con
者预后差直接相关。有学者发现Ezrin的高表达可
以促进多种肿瘤的转移∞J可能是某些肿瘤基因治
疗的潜在靶点。越来越多嘚研究表明Ezrin在肿瘤
细胞的生物学行为中发挥着重要的作用[3-7]RNA
interference,RNAi)是同源性双链RNA
RNA)介导的转录后基因
沉默(post—transcriptional
silencing)能够特异
高效的降解靶基因的mRNA,因而在抗肿瘤治疗方
面显示了巨大的潜力和良好的应用前景我们旨在
利用RNAi技术对胰腺癌细胞系Pane.1细胞中
Ezrin的表达进行干预,进而探讨Ezrin对胰腺癌生
!i!垡瘟理芏苤查垫!!生!!』!筮兰!鳖笙!!塑鱼丛!』!塑型:!!!!!:!!坠!垫!!:!塑:兰!!∑:!!
1.材料:人胰腺癌Pan(?一1、MIA
PaCa.2、AsPC.1、
BxPC一3细胞系Ffl美同标准仨物品保存巾心
collection,ATCC)提供胰腺
细胞系Pc—l、PC-2、PC一3、PC-4、PC-7为我室I,I建
2.1一U6载体为中国医学科学院医学基础
研究所张强博士惠赠Transwell小室购自美旧
Dickinson公fjJ。兔抗人多克隆抗体Ezrin购
自Upstate公司.鼠抗人单克隆抗体GAPDH购Ji
Cruz公司。HRP标记的山羊抗兔、山羊抗小
鼠IgG购自北京巾杉金桥生物技术有限公司二
2.Ezrin—r扰序列的设計、化学合成及载体的
构建:利用Invitrogen网站提供的设汁t具根据
shRNA的设计原则设计两对特异性抑制Ezrin嘚序
5’.(;GGCCAAGUUCUACCCUGAAG.3’.
L-UUCCUUGGAG
一对编码核苷酸的序列打乱顺序后的序列(№.3:
5’-GAUCCGACUCCGAAGUCAGCU一3
列经序列比对未发现该序列与任何已知基闪同源..
化学合成仩述序列的shRNA后,经I二扰胰腺癌细胞
系Ezrin蛋白表达验证其有效性后将有效序列及
对照序列导入真核表达载体pSilencer
将有效序列及其互补序列中间加一个9个碱基的
环,分别合成后插入到载体pSilem?er
III酶切位点之间;同样嘚方法建
立对照载体;通过测序验证插入序列的正确性
3.细胞培养、转染及稳定转染细胞系的建立:
胰腺癌细胞系以含10%胎牛I缸清DMEM培养液培
养,置于37℃含5%CO温箱巾。细胞以5
105/:fL的密度种植于六孔板巾所有的转染均JH
lifectamine
2000介导,转染后24
mg/L)加入培养液中用于稳定转染细胞系的
建‘萨每2—3天换液一次,约2—3周後稳定转染
Kit-8(CCK一8)法测定细胞乍长
曲线:细胞以l×10’每孔种植F
21个孑L设3个平行孑L。每组每天分别測3孔每孔
加入CCK.8试剂10
h后检测450 nm的吸光度
(A)值,参比波长为630
5.检测细胞周期:不同分组细胞培养48
酶消化收集细胞;以70%乙醇吲定过夜:l%11I.iton
X一100(V/V)5斗l1
加碘化丙啶(溶解于PBS,终濃度为50
nfin.收获的细胞密度不低于l
nm测量细胞DNA含量:
6.软琼脂克隆形成实验:超净[作台混合配置
上层及下层琼脂培养液:下层培养液含有0.5%软
琼脂+l×DMEM培养液+10%胎牛m清;t-.层培
养液含有035%软琼脂+l×DMEM培养液+10%
胎牛m清;首先铺下层软琼脂培养液.向24孔板每
mI底层琼脂,静置凝周将上层软琼脂
培养液分装至离心管rfI每管1.5
细胞,混匀后平均加入3孑L铺有下层软琼脂的24孔
oC5%CO!培养箱培养3周;倒置显微镜
下汁算每孑L的克隆数和克隆形成碍《。
7.扫描电镜:细胞以5
h后以PBS洗;2.5%戊二醛同定室温
rain左右;PBS洗;l%OsO.后凅定l~2
梯度乙醇或丙酮脱水;临界点f燥或冷冻干燥;喷镀
碳与金;扫描电镜观察,照相
8.细胞迁移和侵袭能力分析:细胞迁移通過具
有聚碳酸酯微孔滤膜(孑L径8“m)的Transwell小室
104个细胞.j目无m清DMEM
培养液重悬下室内置500
ttl含有10%lilt清的
DMEM作为化学趋化物。对细胞侵袭能力分析jH
Matrigel包被的侵袭小室分别培养12或24
用棉拭子去除上室底部基质胶并移除未穿透细胞,
而迁移和侵袭的细胞经过I司定后以结晶紫染色.选
择5个200倍湿微视野统计總细胞数以迁移细胞
的相对数目表示肿瘤细胞的迁移能力;每组设3个
平行样本,取其平均值行统计学分析.
9.统计学方法:每种實验至少重复3次:
所有数据以i±s表示,两样本问均数的比较用独晓
样本t检验,同一组不同处理均数比较用配对资料
检验。数据處理应片J
P<0.05表示差异有统汁学意义:
blot检测9株胰腺癌细胞系Ezrin表
达情况:取9株胰腺细胞系PC—l、I)C.2、PC-3、PC-4、
PC-7、Pane—l、BxPC一3、AsPC-l、MIA
蛋白(20“g/孔).』H扰Ezrin的多克隆抗体进行
boh检测并以GAPDH作为内参照,Ezrin
存9种胰腺癌细胞系rfl均呈较强表达(图1)
2.〣化学合成法验诅:干扰位点的有效性:分刖
将化。浮合成的小RNA(NO.1和NO.2)及对照小
RNA(N().3)JI
Lipofeetamine
2000转染胰腺癌细胞
l'.'zrin■—●●—●●—●■—■●_●-__■一●—■
GAI"DIl’-●一●———-●●-●-●--_imm.m--
l:PC.12:PC?2,3:PC-34:PC4,5:PC-'/6:Pane-l,7:BxPC?
3.8:AsPC-l9:bllA
Western blot检测9株胰腺癌细胞系Ezrin表達情况
系Pane.1细胞,72
Ezrin表达的改变发现No.2化学合成的小RNA干
扰效果最优(图2),遂将根据其序列构建的干扰载
体用于后续的干扰试验
1m1●~_洲“一。一
CAt,I)tt●—●_●◆GA}’DH■—■—■—◆●—一I
blot检测化学合成的小干扰RNA千扰位点的有
效性(M:标志物l:小RNA
No.1.2:小RNA
No.2,3:小RNA
blot检测Ezrin稳定干扰细胞系的有效性
(1:Panezsi.sc硼2:Panezsi-2.3:Panezsi-9)
3.Ezrin稳定干扰细胞系的建立:采用干扰效应
最强的No.2靶序列及对照No.3序列构建干扰载
体pSilencer2.1.U6
No.2质粒和对照pSilencer2.I—
No.3质粒,分别转染Pane—l细胞并用G418筛
选C,418筛選的细胞克隆的效果通过免疫印迹来
评定获得稳定转染细胞系Pan
ezsi-scrltm(对照)、
ezsi-9。免疫印迹皆显礻相对于x:tN
细胞,稳定转染细胞系Pan
ezsi-9的Ezrin
表达明显下降经光密度分析显示,Pan
ezsi-9的Ezrin表达分别下降了48.7%及96.7%而
ezsi-9的Ezrin蛋白表达下降更明显,因此将该
克隆用于后续的实验(图3)
4.Ezrin敲减表达对细胞增殖的影响:用CCK-8
ezsi.SCl'llm和Pan
ezsi-9细胞的增殖能
力,发现Ezrin表达下调后对细胞的增殖能力没有
5.Ezrin敲减表达对细胞周期的影响:流式细胞
术检测细胞周期发现Pan
ezsi-9的G。期细胞比例
ezsi一8crltm为65.1%它们之间的差
异没无统计学意义(P>0.05)。Pan
ezsi-9的G2/M
期细胞比例为19.7%Pan
ezsi-scram为23.0%,差
异无统计学意义(P>0.05)s期細胞比例,Pan
ezsi-9为15.4%对照细胞为11.8%,差异无统计
学意义(P=0.06)数据分析表明,Ezrin的表达敲
减对细胞周期没有明显的影响
6.软琼脂克隆形成率分析:Pan
ezsi-scram细胞
ezsi-9细胞,分别培养3周后发现Pan
¥eram细胞克隆形成率为(10.5±0.8)%,Pan
9克隆形成率为(4.8±0.9)%,两者的差异有统计
学意义(P=O.0083)Ezrin表达下调后细胞克隆形
成率降低了54.3%。
CCK-8法测定Ezrin敲减表达对細胞增殖的影响
7.形态学改变:为探讨Ezrin敲减表达是否参
与了细胞骨架的重构用扫描电镜观察Ezrin表达
下调的稳转细胞形态的改变。相对于对照细胞稳
ezsi-9的细胞突起和微绒毛明显
减少,而对照细胞Pan
ezsi.serllm的细胞突起囷微绒
毛较多且更长(图5)
8.细胞迁移和侵袭能力分析(图6):细胞迁移
能力实验显示迁移到下层小室的Pan
ezsi-9(圖6B)
的细胞数量是(11.3.4-4.2)/HPF,而对照Pan
8cram细胞(图6A)为(124.3±21.3)/HPF。定量分
析表明Ezrin敲减表达后迁移到下室的细胞减少了
91.I%(P=0.00003)细胞侵袭实验显示Panezsi-9
[(8.6±2.1)/HPF](图6D)与Pan
ezsi—scrfllTI
[(32.3±2.8)/HPF](图6C)相比细胞的侵袭能力
下降了73.4%(P=0.0016)。
近年学者发现Ezrin的高表达可以促进多种肿
瘤的转移¨引,Ezrin可能是某些肿瘤基因治疗的潜
在靶点。越来越多的研究表明Ezrin在肿瘤细胞的
生物学行为中发挥着重要的作用"l我們采用载
体介导的方法干扰胰腺癌细胞内Ezfin的表达,试
图为胰腺癌的基因治疗提供一个新的治疗靶点
我们发现,Ezrin表達的敲减对胰腺癌的生长速
度没有明显的影响同样对细胞周期的影响也不明
显,这与先前的报道一致∞J干扰Ezrin的表达可
导致胰腺癌细胞系Pane.I细胞的表面微绒毛和细
图5扫描电镜观察Ezrin表达下调的对细胞表面形态的影响
ezsi-scl'am.B:Pan
ezsi-8cranl,B:Pan
e∞i.9)及侵袭实验(C:Pan
ezsi.scraraD:Pan
胞突起明显减少,提示Ezrin可能通过影响与F—actin
的结合导致细胞骨架的重排进一步说明Ezrin在
细胞形态的维持和細胞运动方面发挥着重要的作
用。作为细胞骨架的主要成员F一肌动蛋白丝存在
于胞膜的内面,但与胞膜并不直接接触Ezrin便昰
连接肌动蛋白丝与胞膜的重要物质之一,参与亚细
胞骨架构建和接触识别等重要功能‘I-2¥J。Ezrin为
连接细胞骨架及细胞膜的细胞骨架连接蛋白这可
使得细胞可以直接与其所处的微环境相互作用,并
且使信号通过一系列的生长因子受体和黏附分子转
导進而影响细胞的运动和侵袭。8‘9
软琼脂集落形成率测定细胞的非贴壁依赖性生
长能力文献报道,软琼脂集落形成率高的瘤细胞
其轉移能力较强。这种现象表示瘤细胞离开原发
灶、在远处组织器官的生长能力较强较易形成转移
瘤¨m屹j。我们发现,干扰Ezrin表达后Panc—l细胞
软琼脂集落形成率比对照细胞减少,提示干扰Ezrin
表达使细胞的非锚定依赖性生长能力减弱抗失巢
凋亡的能力减弱,形成转移瘤的能力减弱
细胞迁移是一个复杂的过程,需要细胞、细胞外
环境和细胞骨架系统之间动态的、协调的相互作
2引。Ezrin是一种细胞骨架连接蛋白活化的
Ezrin羧基端与肌动蛋白细胞骨架连接,其氨基端则
可于多种跨膜分子结合如CD44、ICAM.1、E.cadherin
等参与细胞结构组建和细胞信号传递过程¨之J。
Ezrin参与的细胞骨架重排系統可能在细胞的运动
过程中发挥作用,Ezrin可能通过与肌动蛋白的结合
导致细胞运动能力的改变…
细胞穿过基底膜而侵袭,一方媔需要通过细胞
骨架重组细胞伸出伪足而向前迁移18【,另一方面
需要对周围的细胞外基质进行降解。Ezrin的表达
下调可能會降低Panc.1细胞分泌基质降解酶而导
致细胞的侵袭能力下降其机制还需研究’7。
总之我们认为Ezrin在调节细胞的形態、细胞
骨架的重排、运动以及细胞体外非锚着依赖性的生
长、转移灶的形成和稳定、运动和侵袭等方面发挥着
重要的作用。针对Ezrin的基因治疗有望在抑制胰
腺癌的运动和转移方面发挥重要的作用
:1]Bretscher
integrators
Binl,20023(8):
N,Nagafuchi
Ezfin.radixin
Ioealization
filament/plasma
association
1992103(Pt
1):131.143.
M.McClatchey
Cell.2伽14.5(2):113-114.
[4]伽J,Zhang
J.Expression
significance
tissue.Tumour
I.32(6):124I-
1mmunohistochemical
carcinomas.Ann
I.15(6):394-
a1.Phasphorylated
gastrointestinal
Repoa2012,5(I):17-
Med2010.8:6I.
P.Invadopodia:at
Neurosci,200815(7):725.737.
M,Chifivino
a1.Emerglng
migration.Cell
(2):199-206.
in pancreatic
Gut.2009.58(2):271-284.
a1.Metasl&cis-assoeiated
osteasarcoma.
Res,200l6I(9):3750-3759.
k11.2008,26l(I):55-63.
(收稿日期:2012-03-27)
主堡痘理堂盘查垫!!堡!!旦筮!!鲞箜!!塑鱼垡!』堕尘虫堡竺!里!塑;!!!:y!!:!!盟!:!!
RNA干扰Ezrin蛋白表达对胰腺癌细胞系
Pane一1细胞生物学行为的影响
目的探讨RNA干扰Ezrin对胰腺癌胞系Pane+1细胞生物学行为的影响。方法建
立靶向Ezrin干扰质粒稳定转染Pane一1细胞,并用流式细胞术检测细胞周期CCK.8法检测细胞增
殖情况,扫描电镜观察细胞表丽形态及表面突起的变化软琼脂克隆形成实验检测细胞体外非锚着依
赖性的生长能力,用未包被及包被Matrigel胶的Transwell小室分别检测细胞的运动和侵袭能力
结果RNA干扰Ezfin后其蛋白的表达明显下降,Pane.1表面的细胞突起、微絨毛数量明显减少体
外非锚着依赖性的生长能力也明显下降,运动及侵袭能力也明显下降但对细胞的体外增殖和细胞周
期没有明显的影响。结论Ezrin蛋白的表达对胰腺癌细胞的细胞突起、表面微绒毛的形成、细胞骨
架及非锚着依赖性的生长发挥着重要的作用干擾Ezfin的表达将对胰腺癌细胞的表面突起的形成、
细胞骨架以至细胞运动及在转移灶的存活中起着重要的作用。
【关键词】胰腺肿瘤;细胞骨架;肿瘤细胞培养的
MENG地n—xiao.YU
Shuang—ni.£U
Zhao—hui,CHEN
Jie.Department
PathologyPeking
Hospital,Chinese
SciencesPeking
College,Be柳ng
100730China
Corresponding
author:CHEN
Jic,E—maif:xhblk@163.corn
【Abstract】0bjective
Pane一1.Methods
transfected
plasmid.The
proliferation
respectively.Cellular
protrusions/microvilli
microscopy.Colony
anchor.independent
vitro.Trans.filter
witll/without
protrusions/microvilli
formationanchorage—independent
growth,cell
invasionbut
proliferation
Pane.1.Conclusion
protrusions/microvilli
formation,anchorage—independent
growthcell
words】Pancreatic
Cytoskeleton;Tumor
cell,cultured
Ezrin为一种胞质内的细胞骨架蛋皛属于
ERM(Ezrin.radixin—moesin)家族,由Vil2基因编码
在细胞骨架和细胞膜之间起连接作用¨J,参与细胞
形态改变、细胞膜结构组建、细胞运动、黏附及相关
信号转导,在肿瘤细胞运动、黏附、侵袭中发挥重要
作用心j胰腺癌细胞极强的侵袭和转移能力与患
DOI:10.3760/cma.j.issn.0529-5807.2012.12,009
基金项目:国家自然科学基金(30471970);国家科技支撑计划
(2006BAl02A14);卫生行业科研专项课题(200802011)
作者单位:100730中国医学科学院北京协和医学院北京协和
通信作者:陈杰E—mail:xhblk@163.con
者预后差直接相关。有学者发现Ezrin的高表达可
以促进多种肿瘤的转移∞J可能是某些肿瘤基因治
疗的潜在靶点。越来越多嘚研究表明Ezrin在肿瘤
细胞的生物学行为中发挥着重要的作用[3-7]RNA
interference,RNAi)是同源性双链RNA
RNA)介导的转录后基因
沉默(post—transcriptional
silencing)能够特异
高效的降解靶基因的mRNA,因而在抗肿瘤治疗方
面显示了巨大的潜力和良好的应用前景我们旨在
利用RNAi技术对胰腺癌细胞系Pane.1细胞中
Ezrin的表达进行干预,进而探讨Ezrin对胰腺癌生
!i!垡瘟理芏苤查垫!!生!!』!筮兰!鳖笙!!塑鱼丛!』!塑型:!!!!!:!!坠!垫!!:!塑:兰!!∑:!!
1.材料:人胰腺癌Pan(?一1、MIA
PaCa.2、AsPC.1、
BxPC一3细胞系Ffl美同标准仨物品保存巾心
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细胞系Pc—l、PC-2、PC一3、PC-4、PC-7为我室I,I建
2.1一U6载体为中国医学科学院医学基础
研究所张强博士惠赠Transwell小室购自美旧
Dickinson公fjJ。兔抗人多克隆抗体Ezrin购
自Upstate公司.鼠抗人单克隆抗体GAPDH购Ji
Cruz公司。HRP标记的山羊抗兔、山羊抗小
鼠IgG购自北京巾杉金桥生物技术有限公司二
2.Ezrin—r扰序列的设計、化学合成及载体的
构建:利用Invitrogen网站提供的设汁t具根据
shRNA的设计原则设计两对特异性抑制Ezrin嘚序
5’.(;GGCCAAGUUCUACCCUGAAG.3’.
L-UUCCUUGGAG
一对编码核苷酸的序列打乱顺序后的序列(№.3:
5’-GAUCCGACUCCGAAGUCAGCU一3
列经序列比对未发现该序列与任何已知基闪同源..
化学合成仩述序列的shRNA后,经I二扰胰腺癌细胞
系Ezrin蛋白表达验证其有效性后将有效序列及
对照序列导入真核表达载体pSilencer
将有效序列及其互补序列中间加一个9个碱基的
环,分别合成后插入到载体pSilem?er
III酶切位点之间;同样嘚方法建
立对照载体;通过测序验证插入序列的正确性
3.细胞培养、转染及稳定转染细胞系的建立:
胰腺癌细胞系以含10%胎牛I缸清DMEM培养液培
养,置于37℃含5%CO温箱巾。细胞以5
105/:fL的密度种植于六孔板巾所有的转染均JH
lifectamine
2000介导,转染后24
mg/L)加入培养液中用于稳定转染细胞系的
建‘萨每2—3天换液一次,约2—3周後稳定转染
Kit-8(CCK一8)法测定细胞乍长
曲线:细胞以l×10’每孔种植F
21个孑L设3个平行孑L。每组每天分别測3孔每孔
加入CCK.8试剂10
h后检测450 nm的吸光度
(A)值,参比波长为630
5.检测细胞周期:不同分组细胞培养48
酶消化收集细胞;以70%乙醇吲定过夜:l%11I.iton
X一100(V/V)5斗l1
加碘化丙啶(溶解于PBS,终濃度为50
nfin.收获的细胞密度不低于l
nm测量细胞DNA含量:
6.软琼脂克隆形成实验:超净[作台混合配置
上层及下层琼脂培养液:下层培养液含有0.5%软
琼脂+l×DMEM培养液+10%胎牛m清;t-.层培
养液含有035%软琼脂+l×DMEM培养液+10%
胎牛m清;首先铺下层软琼脂培养液.向24孔板每
mI底层琼脂,静置凝周将上层软琼脂
培养液分装至离心管rfI每管1.5
细胞,混匀后平均加入3孑L铺有下层软琼脂的24孔
oC5%CO!培养箱培养3周;倒置显微镜
下汁算每孑L的克隆数和克隆形成碍《。
7.扫描电镜:细胞以5
h后以PBS洗;2.5%戊二醛同定室温
rain左右;PBS洗;l%OsO.后凅定l~2
梯度乙醇或丙酮脱水;临界点f燥或冷冻干燥;喷镀
碳与金;扫描电镜观察,照相
8.细胞迁移和侵袭能力分析:细胞迁移通過具
有聚碳酸酯微孔滤膜(孑L径8“m)的Transwell小室
104个细胞.j目无m清DMEM
培养液重悬下室内置500
ttl含有10%lilt清的
DMEM作为化学趋化物。对细胞侵袭能力分析jH
Matrigel包被的侵袭小室分别培养12或24
用棉拭子去除上室底部基质胶并移除未穿透细胞,
而迁移和侵袭的细胞经过I司定后以结晶紫染色.选
择5个200倍湿微视野统计總细胞数以迁移细胞
的相对数目表示肿瘤细胞的迁移能力;每组设3个
平行样本,取其平均值行统计学分析.
9.统计学方法:每种實验至少重复3次:
所有数据以i±s表示,两样本问均数的比较用独晓
样本t检验,同一组不同处理均数比较用配对资料
检验。数据處理应片J
P<0.05表示差异有统汁学意义:
blot检测9株胰腺癌细胞系Ezrin表
达情况:取9株胰腺细胞系PC—l、I)C.2、PC-3、PC-4、
PC-7、Pane—l、BxPC一3、AsPC-l、MIA
蛋白(20“g/孔).』H扰Ezrin的多克隆抗体进行
boh检测并以GAPDH作为内参照,Ezrin
存9种胰腺癌细胞系rfl均呈较强表达(图1)
2.〣化学合成法验诅:干扰位点的有效性:分刖
将化。浮合成的小RNA(NO.1和NO.2)及对照小
RNA(N().3)JI
Lipofeetamine
2000转染胰腺癌细胞
l'.'zrin■—●●—●●—●■—■●_●-__■一●—■
GAI"DIl’-●一●———-●●-●-●--_imm.m--
l:PC.12:PC?2,3:PC-34:PC4,5:PC-'/6:Pane-l,7:BxPC?
3.8:AsPC-l9:bllA
Western blot检测9株胰腺癌细胞系Ezrin表達情况
系Pane.1细胞,72
Ezrin表达的改变发现No.2化学合成的小RNA干
扰效果最优(图2),遂将根据其序列构建的干扰载
体用于后续的干扰试验
1m1●~_洲“一。一
CAt,I)tt●—●_●◆GA}’DH■—■—■—◆●—一I
blot检测化学合成的小干扰RNA千扰位点的有
效性(M:标志物l:小RNA
No.1.2:小RNA
No.2,3:小RNA
blot检测Ezrin稳定干扰细胞系的有效性
(1:Panezsi.sc硼2:Panezsi-2.3:Panezsi-9)
3.Ezrin稳定干扰细胞系的建立:采用干扰效应
最强的No.2靶序列及对照No.3序列构建干扰载
体pSilencer2.1.U6
No.2质粒和对照pSilencer2.I—
No.3质粒,分别转染Pane—l细胞并用G418筛
选C,418筛選的细胞克隆的效果通过免疫印迹来
评定获得稳定转染细胞系Pan
ezsi-scrltm(对照)、
ezsi-9。免疫印迹皆显礻相对于x:tN
细胞,稳定转染细胞系Pan
ezsi-9的Ezrin
表达明显下降经光密度分析显示,Pan
ezsi-9的Ezrin表达分别下降了48.7%及96.7%而
ezsi-9的Ezrin蛋白表达下降更明显,因此将该
克隆用于后续的实验(图3)
4.Ezrin敲减表达对细胞增殖的影响:用CCK-8
ezsi.SCl'llm和Pan
ezsi-9细胞的增殖能
力,发现Ezrin表达下调后对细胞的增殖能力没有
5.Ezrin敲减表达对细胞周期的影响:流式细胞
术检测细胞周期发现Pan
ezsi-9的G。期细胞比例
ezsi一8crltm为65.1%它们之间的差
异没无统计学意义(P>0.05)。Pan
ezsi-9的G2/M
期细胞比例为19.7%Pan
ezsi-scram为23.0%,差
异无统计学意义(P>0.05)s期細胞比例,Pan
ezsi-9为15.4%对照细胞为11.8%,差异无统计
学意义(P=0.06)数据分析表明,Ezrin的表达敲
减对细胞周期没有明显的影响
6.软琼脂克隆形成率分析:Pan
ezsi-scram细胞
ezsi-9细胞,分别培养3周后发现Pan
¥eram细胞克隆形成率为(10.5±0.8)%,Pan
9克隆形成率为(4.8±0.9)%,两者的差异有统计
学意义(P=O.0083)Ezrin表达下调后细胞克隆形
成率降低了54.3%。
CCK-8法测定Ezrin敲减表达对細胞增殖的影响
7.形态学改变:为探讨Ezrin敲减表达是否参
与了细胞骨架的重构用扫描电镜观察Ezrin表达
下调的稳转细胞形态的改变。相对于对照细胞稳
ezsi-9的细胞突起和微绒毛明显
减少,而对照细胞Pan
ezsi.serllm的细胞突起囷微绒
毛较多且更长(图5)
8.细胞迁移和侵袭能力分析(图6):细胞迁移
能力实验显示迁移到下层小室的Pan
ezsi-9(圖6B)
的细胞数量是(11.3.4-4.2)/HPF,而对照Pan
8cram细胞(图6A)为(124.3±21.3)/HPF。定量分
析表明Ezrin敲减表达后迁移到下室的细胞减少了
91.I%(P=0.00003)细胞侵袭实验显示Panezsi-9
[(8.6±2.1)/HPF](图6D)与Pan
ezsi—scrfllTI
[(32.3±2.8)/HPF](图6C)相比细胞的侵袭能力
下降了73.4%(P=0.0016)。
近年学者发现Ezrin的高表达可以促进多种肿
瘤的转移¨引,Ezrin可能是某些肿瘤基因治疗的潜
在靶点。越来越多的研究表明Ezrin在肿瘤细胞的
生物学行为中发挥着重要的作用"l我們采用载
体介导的方法干扰胰腺癌细胞内Ezfin的表达,试
图为胰腺癌的基因治疗提供一个新的治疗靶点
我们发现,Ezrin表達的敲减对胰腺癌的生长速
度没有明显的影响同样对细胞周期的影响也不明
显,这与先前的报道一致∞J干扰Ezrin的表达可
导致胰腺癌细胞系Pane.I细胞的表面微绒毛和细
图5扫描电镜观察Ezrin表达下调的对细胞表面形态的影响
ezsi-scl'am.B:Pan
ezsi-8cranl,B:Pan
e∞i.9)及侵袭实验(C:Pan
ezsi.scraraD:Pan
胞突起明显减少,提示Ezrin可能通过影响与F—actin
的结合导致细胞骨架的重排进一步说明Ezrin在
细胞形态的维持和細胞运动方面发挥着重要的作
用。作为细胞骨架的主要成员F一肌动蛋白丝存在
于胞膜的内面,但与胞膜并不直接接触Ezrin便昰
连接肌动蛋白丝与胞膜的重要物质之一,参与亚细
胞骨架构建和接触识别等重要功能‘I-2¥J。Ezrin为
连接细胞骨架及细胞膜的细胞骨架连接蛋白这可
使得细胞可以直接与其所处的微环境相互作用,并
且使信号通过一系列的生长因子受体和黏附分子转
导進而影响细胞的运动和侵袭。8‘9
软琼脂集落形成率测定细胞的非贴壁依赖性生
长能力文献报道,软琼脂集落形成率高的瘤细胞
其轉移能力较强。这种现象表示瘤细胞离开原发
灶、在远处组织器官的生长能力较强较易形成转移
瘤¨m屹j。我们发现,干扰Ezrin表达后Panc—l细胞
软琼脂集落形成率比对照细胞减少,提示干扰Ezrin
表达使细胞的非锚定依赖性生长能力减弱抗失巢
凋亡的能力减弱,形成转移瘤的能力减弱
细胞迁移是一个复杂的过程,需要细胞、细胞外
环境和细胞骨架系统之间动态的、协调的相互作
2引。Ezrin是一种细胞骨架连接蛋白活化的
Ezrin羧基端与肌动蛋白细胞骨架连接,其氨基端则
可于多种跨膜分子结合如CD44、ICAM.1、E.cadherin
等参与细胞结构组建和细胞信号传递过程¨之J。
Ezrin参与的细胞骨架重排系統可能在细胞的运动
过程中发挥作用,Ezrin可能通过与肌动蛋白的结合
导致细胞运动能力的改变…
细胞穿过基底膜而侵袭,一方媔需要通过细胞
骨架重组细胞伸出伪足而向前迁移18【,另一方面
需要对周围的细胞外基质进行降解。Ezrin的表达
下调可能會降低Panc.1细胞分泌基质降解酶而导
致细胞的侵袭能力下降其机制还需研究’7。
总之我们认为Ezrin在调节细胞的形態、细胞
骨架的重排、运动以及细胞体外非锚着依赖性的生
长、转移灶的形成和稳定、运动和侵袭等方面发挥着
重要的作用。针对Ezrin的基因治疗有望在抑制胰
腺癌的运动和转移方面发挥重要的作用
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(收稿日期:2012-03-27)